（一）消化系統(tǒng)分泌實驗

1．胃液分泌實驗 胃液收集常選用狗和大白鼠。由狗右側(cè)嘴角插入胃管收集胃液，大白鼠則需剖腹，從幽門端向胃內(nèi)插入一直徑約3mm的塑料管，在緊靠幽門處結(jié)扎固定，以收集胃液，可進行胃酸的測定和胃蛋白酶的測定。

2．胰液分泌實驗 胰液收集可選用狗、兔或大白鼠。在全麻下進行手術(shù)，狗在主胰管開口十二指腸降部，距幽門12cm左右處，要將十二指腸翻轉(zhuǎn)，在其背面即可找到。兔的胰腺很分散，胰管位于十二指腸的升段，距離幽門約17cm左右處。分別向主胰管內(nèi)插入細導管收集胰液。大白鼠的胰管與膽管匯集于一個總管，在其入腸處插管固定，并在近肝門處結(jié)扎和另行插管，就可分別收集到膽汁和胰液。大白鼠的胰液很少，插入內(nèi)徑約0.5mm的透明導管后，以胰液充盈的長度作為觀察胰液分泌的指標。慢性實驗時可選用狗作胰瘺手術(shù)后收集胰液。

3．膽汁分泌實驗為了觀察某些藥物對泌膽、排膽以及存在于膽系內(nèi)結(jié)石的影響，需要研究用藥前后膽汁流量及其成分的變化。膽汁可分別給動物作膽囊瘺和總膽管瘺收集。膽囊瘺常選用狗、貓、兔和豚鼠進行，而以狗為佳。在全麻下進行手術(shù)，以右肋緣下橫切口的暴露最為滿意。如欲觀察肝膽汁的分泌情況需要結(jié)扎膽囊管或選用大鼠，因后者無膽囊，所以作總膽管造瘺手術(shù)常選用大白鼠。收集膽汁后可進行各種膽汁的化學分析。

（二）消化系統(tǒng)運動實驗

動物離體標本實驗消化道平滑肌具有肌源性運動的特點，動物離體的腸段、膽囊、乃至胃腸肌片，只要具有合適的存活環(huán)境就可保持其運動機能。這是藥理學研究中常用的一種離體實驗方法，這具有實驗條件較易控制、操作較簡單、用一般儀器設(shè)備即能工作等優(yōu)點，從而應(yīng)用較廣。

標本制備大都選用兔、豚鼠、大白鼠等動物的組織，也可利用手術(shù)中取下或猝死剖檢時取下的消化道器官進行實驗。

取禁食24小時的動物，通常用擊頭致斃法處死，以避免麻醉或失血等對胃腸運動機能的影響。立即常規(guī)剖腹，取出所需的胃、腸、膽囊等，去除附著的系膜或脂肪等組織。迅速放在充氧（或含5%CO2）、保溫（37℃）的保溫液中，并以注射器用保溫液將管腔內(nèi)的食物殘渣洗凈。操作時動作要輕柔，沖洗時不宜采取高壓以免疫組織攣縮。

若以肌片為標本，一般剪取1～5mm寬，1～2cm長的一段即可。若用動物的腸管做實驗時，通常取十二腸或回腸。十二指腸的興奮性、切律性較高，呈現(xiàn)活躍的舒縮運動?；啬c運動比較靜息，其運動曲線的基線比較穩(wěn)定。所用的標本大都取1.5cm左右一段即可。以狗的膽囊做實驗時可截取4mm寬，2cm長的全層肌片。兔、豚鼠等的膽囊較小，取材時常與膽管一起摘下。兔的膽囊可沿其長軸一剖為二，豚鼠則可以整個膽囊或取其半進行實驗。做膽管的離體實驗量，通常取狗的總膽管，將相聯(lián)的十二指腸組織切除，留下乳頭以及膽道末端括約肌組織。

離體胃、腸運動的電活動，除了峰形電位外還可記錄到周期性的慢波。它們在胃腸道的不同部位以及不同種屬的動物間存在一定差異。